1. 引言
中国水仙(Narcissus tazetta var.chinensis)为石蒜科(Amaryllidaceae)水仙属(Narcissus)多年生草本植物。常见的中国水仙有2个品种:1) 单瓣水仙,花单瓣,花冠6裂,呈盘状、白色;副花冠黄色、浅杯状,又名“金盏银台”;2) 重瓣水仙,花重瓣,副花冠和雄蕊花瓣状,瓣形扭转呈簇,又名“玉玲珑” [1] 。水仙一般秋冬开始水养,春节前后即可开花。近年来,居室水养水仙已逐渐形成一种风尚 [2] 。为了提高水仙的观赏价值,人们用各种方法调控水仙生长 [3] 。有关中国水仙的研究,国外未见报道;国内主要研究矮壮素对花期及生长的影响,通过使用矮壮素处理,使水仙植株矮化粗壮,叶片碧绿,不易倒伏,增大花朵直径,减慢细胞解体的作用,延长花期,从而有效提高水仙的观赏价值 [4] - [10] 。也有从冷藏方面入手进行研究的报道 [11] [12] [13] [14] ;还有从生理生化变化、花芽分化、结构变化等方面着手进行研究的报道 [15] [16] [17] [18] 。低温贮藏后,水仙解剖结构方面的研究未见报道。本研究主要从解剖学的角度,研究低温贮藏后,在非正常观赏期,通过水养,观赏单瓣水仙、重瓣水仙花瓣和叶片的显微结构,与正常情况下用矮壮素处理的两个品种相应结构进行对比,了解其变化,为后续水仙生长延缓剂的研发和延长水仙的观赏期提供解剖学依据,也可为保鲜剂的制备提供理论依据。
2. 材料与方法
2.1. 实验材料
本实验材料为来自漳州百叶水仙基地的三年生单瓣水仙、重瓣水仙。
2.2. 水仙鳞茎低温处理方法
于元旦前,选择饱满、健壮、无损害、大小一致的单瓣水仙、重瓣水仙鳞茎,经除去干枯的鳞片叶、用多层吸水纸包裹鳞茎,置于冰箱的生物保鲜格,温度控制在1℃~4℃之间,贮藏时间为6~10 m。
2.3. 正常观赏期鳞茎水养处理方法
在春节前,各选取大小一致的两个品种水仙鳞茎,剥去鳞茎外表的褐色鳞片,并刮净旧根,放入市售矮壮素(主要成分为PP333)培养液,浸泡2 d,此后用清水培养,每天换水,置于
20 ℃
光照恒温箱中培养,保证12 h光照,12 h黑暗,水养至开花。并设4组对照。
2.4. 低温贮藏后鳞茎水养处理方法
在夏秋季节,选取低温保存6~10 m的两个品种水仙鳞茎,剥去鳞茎外表的褐色鳞片,并刮净旧根,放入清水中进行水培。置于
20 ℃
光照恒温箱中培养,每天换水,保证12 h光照,12 h黑暗,水养至开花。并设4组对照。
2.5. 组织切片制作方法
在水养的不同时期,分别切取不同处理方法、不同发育阶段的水仙叶片的中间部分及花,用卡诺氏固定液固定,爱氏苏木精整体染色、1%碱性品红酒精液复染。常规石蜡切片法制片,切片厚度为8 μm,光学树胶封固,Olympus显微镜观察并摄影。
数据测量、统计、计算方法:观察相同时期的15个视野的切片材料,对每个视野中的细胞大小、比值进行测量、计算,再统计其平均值。
3. 观察结果
低温保存的两个品种水仙,水养12~15 d后,可以观赏。从外观上看,花葶明显矮化,叶片翠绿,无倒伏现象,达到了添加矮壮素后的效果,但观赏时间较正常观赏的时间短。
低温保存、矮壮素处理的水仙,水养发育过程均可分为三个阶段:幼嫩期、生长期和成熟期。幼嫩期是浸水萌动到叶片抽出、可见绿叶前的时期;生长期是绿色叶片生长到花葶伸出、花苞破裂前的时期;成熟期是花苞破裂、花柄明显伸长到观赏结束的时期。
实验组与对照组的结构变化基本一致。
3.1. 成熟花瓣、成熟叶片的内部结构
在显微镜下观察可见:不同处理方法的两个品种水仙的成熟花瓣横切面由表皮、薄壁组织和维管束三部分组成。表皮细胞壁薄,排列紧密。薄壁组织细胞形状不一,有明显细胞间隙。维管束位于薄壁组织中,组成的薄壁细胞层数有区别,属有限外韧维管束(图版1、图版2)。副花冠的结构与花瓣的相似(图版3)。两个品种水仙的成熟叶片横切面由表皮,叶肉和维管束三部分组成,属等面叶。表皮细胞一层,有气孔器,外被角质层。叶肉由薄壁细胞组成,近表皮的细胞较小、含叶绿体较多,中部的细胞较大、不含或极少含叶绿体;具发达的胞间隙。维管束三列,与表皮层平行;有大型、小型之分,均为有限外韧维管束;大型维管束一列,位于叶肉组织的中央,单个维管束径向呈长条形;小型维管束位于近表皮层的叶肉薄壁组织中,上下各一列;呈圆形。每一相邻大型维管束间,均有1至数对小型维管束分布(图版4、图版5)。
3.2. 花瓣、叶片的内部结构比较
3.2.1. 幼嫩期花瓣的结构特点
在显微镜下,两个品种幼嫩期花瓣横切面可见:上、下表皮均1层细胞,细胞均排列紧密。副花冠:上表皮细胞厚度为15.6 ± 6.2 μm,下表皮细胞厚度为15.1 ± 5.4 μm。薄壁组织由3~6层薄壁细胞组成,无细胞间隙。维管束尚处于分化早期,一列位于薄壁组织中,呈近圆形,与表皮层平行,整体径向长度为35.3 ± 6.9 μm;木质部发育早于韧皮部(图版6)。花瓣:上表皮细胞厚度13.7 ± 6.1 μm,下表皮细胞厚度12.3 ± 6.2 μm。薄壁组织含薄壁细胞5~8层,无细胞间隙。维管束一列位于薄壁组织中,呈近圆形,木质部发育早于韧皮部,整体径向长度为45.3 ± 8.6 μm;维管束发育要晚于副花冠的(图版7)。重瓣水仙花瓣的结构与单瓣水仙花瓣结构相似;维管束的发育时间要比单瓣水仙的早,整体径向长度为27.9 ± 8.6 μm (图版8)。低温处理的花瓣与矮壮素处理的花瓣内部结构差别不大。不同处理方法的材料,在此阶段延续的时间不同:低温处理的持续的时间短,矮壮素处理的持续的时间长。
3.2.2. 幼嫩期叶片的结构特点
在显微镜下,两个品种幼嫩期叶片横切面可见:叶片呈弯月形,中部稍厚,两端渐渐收窄。上、下表皮细胞均为1层,排列紧密。上表皮细胞厚度为21.5 ± 4.7 μm,下表皮细胞厚度为22.3 ± 4.4 μm,表皮细胞外切向壁有轻微角质化。叶肉组织中部含12~25层薄壁细胞,细胞的形状不规则,胞间隙不明显,靠边缘的分化早;叶片边缘的薄壁细胞层数较中部的少,最端部有7~8层薄壁细胞。叶中央部位具维管束一列,位于薄壁组织中央,与表皮层平行,稍偏向上表皮,径向呈长条形带状;此时导管和筛管逐渐形成,导管发育早于筛管。维管束整体径向长度329.2 ± 38.2 μm。在近上表皮和下表皮部位的叶肉薄壁组织,具较密、较小,与大型维管束相间而生的小型维管束对的初始结构,这些小型维管束初始结构呈团状分布,尚未分化,组成细胞比较小、细胞核较大。小型维管束呈近圆形,径向长度为58.4 ± 8.7μm (图版9、图版10)。低温处理的叶片与矮壮素处理的叶片内部结构差别不大。不同处理方法的材料,在此阶段延续的时间不同:低温处理的持续的时间短,维管束分化较快;矮壮素处理的持续的时间长,维管束分化较慢。
3.2.3. 生长期花瓣结构的相同点
在显微镜下,两个品种生长期花瓣横切面可见:
花瓣:表皮由1层细胞组成;外切向壁有轻微角质化。上表皮细胞厚度为15.2 ± 3.9 μm,下表皮细胞厚度为16.3 ± 3.7 μm。薄壁组织由5~10层薄壁细胞组成,有细胞间隙。维管束一列呈椭圆形,整体径向长度为41.3 ± 9.6 μm (图版11)。副花冠:表皮的外切向壁有轻微角质化。上表皮细胞厚度为14.1 ± 3.9 μm,下表皮层细胞厚度为14.6 ± 3.7 μm,上表皮层边缘开始形成波浪状。薄壁组织由4~6层薄壁细胞构成。维管束一列位于薄壁组织中,整体径向长度为39.6 ± 5.4 μm (图版12)。
3.2.4. 生长期花瓣结构的区别点
在生长期,不同处理方法的两个品种花瓣横切面结构,除具上述相同结构外,有以下的区别(表1)。
3.2.5. 生长期叶片结构的相同点
在显微镜下,两个品种生长期叶片横切面可见:叶片呈弯月形,中部稍厚,两端渐渐收窄。上、下表皮细胞形态变为近椭圆形或长方形,外切向壁角质化明显。上表皮细胞厚32.3 ± 5.3 μm,下表皮细胞厚28.0 ± 3.0 μm。叶肉组织含18~31层薄壁细胞,靠近表皮的薄壁细胞较中部的薄壁细胞小,含叶绿体数量多,细胞间隙不明显。而中部的薄壁细胞形态不规则,越往中部体积越大;细胞高度液泡化,细胞间隙明显。位于叶片中部的大型维管束,呈长条状,早期整体径向长度为316.8 ± 33.6 μm;后期整体
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Table 1. Comparison the structures of the petals in growth period
表1. 生长期花瓣的结构比较
径向长度为426.7 ± 35.6 μm。靠近上、下表皮层的小型维管束,早期近圆形,维管束整体径向长度为68.5 ± 6.8 μm;后期近圆形,维管束整体径向长度为85.2 ± 10.5 μm,木质部较韧皮部发达。小型维管束与表皮间的叶肉薄壁细胞含的叶绿体较多,两列小型维管束间的叶肉薄壁细胞含的叶绿体少或不含(图版18)。不同处理方法材料,在此阶段延续的时间不同:低温处理的持续的时间短,矮壮素处理的持续的时间长。
3.2.6. 生长期叶片结构的区别点
在生长期,不同处理方法的两个品种材料,叶片横切面结构除了上述相同结构外,具有以下的区别(表2)。
3.2.7. 成熟期花瓣结构的相同点
在显微镜下,两个品种成熟期花瓣横切面可见:上、下表皮细胞形态渐渐变得不规则,表皮细胞有向外突起、也有向内凹陷,细胞壁厚度随着植物生长发育逐渐增厚。薄壁细胞较大,且靠近中间的部分细胞比较大,近表皮层的逐步变小。维管束呈椭圆形,维管束整体径向长度为66.6 ± 9.2 μm (图版26)。副花冠也渐趋解体、萎缩;上、下表皮层的细胞逐渐变形,解体;维管束整体径向长度为50.8 ± 16.6 μm。
3.2.8. 成熟期花瓣结构的区别点
在成熟期,不同处理方法的两个品种花瓣、副花冠横切面结构,薄壁组织细胞胞间隙增大、部分薄壁细胞解体,花瓣非维管束部位出现明显空腔。除了上述相同结构外,具有以下的区别(表3)。
3.2.9. 成熟期叶片结构的相同点
在显微镜下,两个品种成熟期叶片横切面可见:上、下表皮层的细胞角质层加厚、细胞近方形;上表皮细胞厚度为23.4 ± 4.6 μm,下表皮细胞厚度为20.9 ± 4.4 μm。叶肉组织中央的大型维管束间的薄壁细胞解体,形成比生长期后期更大的空腔。位于上表皮与小型维管束、下表皮与小型维管束间的薄壁细胞相对保持较好;含有较多叶绿体、解体细胞少。大型维管束径向呈长条状、整体径向长度为550.1 ± 57.8 μm;小型维管束近圆形、整体径向长度为114.8 ± 28.0 μm (图版32)。不同处理方法的材料,在此阶段延续的时间不同:低温处理的持续的时间短,矮壮素处理的持续的时间长。
3.2.10. 成熟期叶片结构的区别点
在成熟期,不同处理方法的两个品种材料,叶片横切面结构中两大型维管束间薄壁组织形成的空腔大,大型维管束的薄壁细胞较多解体,除上述相同结构外,具有以下的区别(表4)。
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Table 2. Comparison the structures of the leaves in growth period
表2. 生长期叶片的结构比较
![](Images/Table_Tmp.jpg)
Table 3. Comparison the structures of the petals in mature period
表3. 成熟期花瓣的结构比较
![](Images/Table_Tmp.jpg)
Table 4. Comparison the structures of the leaves in mature period
表4. 成熟期叶片的结构比较
4. 讨论
4.1. 低温保存后花瓣的结构变化与营养消耗相关
低温处理两个品种花瓣的薄壁细胞发育和解体的进程基本相似:薄壁组织细胞形态均不规则,细胞壁较薄。幼嫩期薄壁组织细胞排列紧密,无明显细胞间隙。随着植物生长发育,薄壁组织细胞排列越来越松散,出现了明显的细胞间隙并且逐渐增大。到了成熟期,上、下表皮细胞逐渐有凹陷、变形现象产生;薄壁细胞出现萎缩、解体,导致花瓣非维管束部位明显收缩。这是由于在非正常开花季节开花,鳞茎长时间低温贮藏,消耗了较多营养物质,花瓣组织因营养不足、细胞解体导致产生空腔;维管束木质部导管分子数目增多、呈线状排列,也与需加强水分及无机盐的运输、提高花瓣刚性以维持生长有关。由于贮藏时间较长,鳞茎内贮藏的营养物质消耗较多,此时的花期较正常观赏期处理材料的短。重瓣水仙薄壁细胞解体首先发生在外围的花瓣中,使花瓣出现衰老。解体部位位于上、下表皮之间,并随着解体范围的扩大形成空腔,重瓣水仙花瓣出现空腔数量比单瓣水仙的多、范围大、而且出现的时间早。低温处理材料花瓣与矮壮素处理的花瓣的主要不同点在于:薄壁细胞解体的时间提前及维管束在后期的变化。这是因为矮状素是一种生物生长延缓剂,能阻碍内源赤霉素的合成,延缓细胞伸长 [17] ,使植株纵向生长受到抑制 [18] ;并能减缓花瓣的生长发育进程,延缓衰老时间。相比营养物质消耗过多的低温处理材料,矮状素处理的材料各个阶段延续的时间长,水仙的观赏时间也长。
4.2. 低温保存后叶片的结构变化与合成的不足、营养消耗相关
低温保存后,两个品种水仙叶片薄壁细胞解体的时间和程度,以及小维管束后期明显的半周木类型,与矮状素处理的叶片有不同。矮壮素处理的叶片,发育进入到成熟期的中后段,其表皮细胞排列依旧紧密;叶肉薄壁细胞的胞间隙变大,并在大维管束之间薄壁细胞逐步解体,以后会逐渐增多,并涉及含叶绿体的细胞,从而形成空腔;部分表皮细胞下形成一些类似气孔下室的空腔,使叶片的刚性逐渐变小。低温保存处理的叶片,在生长期的时候,就出现了小范围内薄壁细胞解体现象及形成类似气孔下室的空腔;成熟期变化更加明显;刚性的增加导致相应的细胞增多,使半周木型维管束明显;但在生长期并不涉及那些含叶绿体的薄壁细胞,在成熟期时,涉及少量含叶绿体的细胞。
叶片中的薄壁细胞解体形成空腔,有认为是大型的贮水细胞破裂后,形成的贮水组织、或认为是气腔、也有认为是由大型的薄壁细胞发育形成分泌道,并认为它们可能起着分泌道和通气腔的作用,以增加叶片内的气体交换,从而适应光照弱和相对缺氧的阴生环境 [19] 。从实验结果可以看出:成熟期由于繁殖器官的发育,加上营养器官的代谢,细胞衰老导致的死亡增加,空腔是由薄壁细胞破裂而形成的,且未见分泌道在这阶段解体,这与石蒜科的其它种类有别。一般细胞原生质体被分解后,可再被组织吸收利用 [20] ,但低温处理的材料,由于营养消耗的原因,这种机率大大下降,同时叶肉细胞中的叶绿体结构出现不可逆转的损害,而使叶片呈现衰老特征,因此观赏期短于正常观赏期用矮壮素处理的材料。
薄壁细胞解体首先发生在大型维管束之间的薄壁细胞,并随着解体范围的扩大形成空腔,空腔的出现使植物的叶片刚性逐渐减小。矮壮素处理的破损程度相对较低,叶绿体的完好率较高,这主要是矮状素处理液中,含有抗氧化、清除自由基、减少乙烯的产生、还能降低溶液的pH值、抑制微生物的产生等作用的成分,可促使材料的气孔关闭,降低蒸腾作用;同时磷、钾、铝等元素,还有利于植株对糖份的运输作用 [10] 。因此在成熟期后期,矮壮素处理材料能延迟细胞解体、衰老等现象发生,有效提高观赏价值;低温处理的材料则没有这种变化。
4.3. 低温保存对水仙反季节栽培观赏及水仙保鲜剂研制的意义
传统的水仙观赏一般在元旦至春节期间开放,花期集中,观赏期有季节性限制。而低温保存后的水仙开花可推迟到8月份以后,实现反季节观赏,但观赏期较正常条件的短。低温保存后的水仙在夏秋时节进行水养,从外观上看,花葶明显矮化,叶片翠绿,无倒伏现象,达到了添加矮壮素后的效果,提高了观赏价值。
实验表明,低温贮藏水仙可以调整花期,使水仙反季节开花,所以研究冷藏保存下的水仙的解剖结构,对继续研究水仙的保鲜剂提供了依据。本次实验观察到水仙叶片和花瓣各种细胞的有规律的变化,为低温处理下的后续研究提供了资料。
图版说明
1、矮壮素处理成熟的单瓣水仙花瓣。比例尺 = 55 μm (×75)
2、低温处理成熟的重瓣水仙花瓣。比例尺 = 18 μm (×220)
3、低温处理成熟的单瓣水仙副花冠。比例尺 = 25 μm (×140)
4、矮壮素处理成熟的重瓣水仙叶片。比例尺 = 60 μm (×60)
5、低温处理成熟的单瓣水仙叶片。比例尺 = 70 μm (×75)
6、矮壮素处理幼嫩期单瓣水仙副花冠。比例尺 = 24 μm (×170)
7、矮壮素处理幼嫩期单瓣水仙花瓣。比例尺 = 20 μm (×150)
8、矮壮素处理幼嫩期重瓣水仙花瓣。比例尺 = 12 μm (×270)
9、低温处理幼嫩期单瓣水仙叶片。比例尺 = 42 μm (×70)
10、低温处理幼嫩期重瓣水仙叶片。比例尺 = 34 μm (×90)
11、低温处理生长期单瓣水仙花瓣。比例尺 = 9 μm (×330)
12、低温处理生长期单瓣水仙副花冠。比例尺 = 11 μm (×270)
13、低温处理生长期单瓣水仙花瓣。比例尺 = 20 μm (×150)
14、低温处理生长期单瓣水仙副花冠。比例尺 = 11 μm (×320)
15、低温处理生长期重瓣水仙花瓣。比例尺 = 11 μm (×320)
16、矮壮素处理生长期单瓣水仙花瓣。比例尺 = 12 μm (×290)
17、矮壮素处理生长期重瓣水仙花瓣。比例尺 = 15 μm (×120)
18、矮壮素处理生长期重瓣水仙叶片。比例尺 = 35 μm (×80)
19、低温处理生长期单瓣水仙叶片,示针晶。比例尺 = 30 μm (×110)
20、低温处理生长期单瓣水仙叶片,示分泌腔。比例尺 = 16 μm (×220)
21、低温处理生长期单瓣水仙叶片,示分泌腔。比例尺 = 17 μm (×190)
22、低温处理生长期重瓣水仙叶片,示小型维管束。比例尺 = 14 μm (×250)
23、矮壮素处理生长期单瓣水仙叶片,示分泌腔。比例尺 = 55 μm (×70)
24、矮壮素处理生长期重瓣水仙叶片。比例尺 = 18 μ m (×220)
25、矮壮素处理生长期重瓣水仙叶片,示小型维管束。比例尺 = 36 μm (×110)
26、矮壮素处理成熟期单瓣水仙花瓣。比例尺 = 38 μm (×90)
27、低温处理成熟期单瓣水仙副花冠。比例尺 = 12 μm (×270)
28、低温处理成熟期单瓣水仙花瓣,示维管束。比例尺 = 11 μm (×320)
29、低温处理成熟期重瓣水仙花瓣。比例尺 = 15 μm (×260)
30、矮壮素处理成熟期单瓣水仙花瓣。比例尺 = 13 μm (×300)
31、矮壮素处理成熟期重瓣水仙花瓣。比例尺 = 13 μm (×300)
32、低温处理成熟期单瓣水仙叶片。比例尺 = 36 μm (×110)
33、低温处理成熟期单瓣水仙叶片,示小型维管束。比例尺 = 14 μm (×250)
34、低温处理成熟期重瓣水仙叶片,示小型维管束。比例尺 = 13 μm (×230)
35、矮壮素成熟期单瓣水仙叶片。比例尺 = 13 μm (×230)
36、矮壮素成熟期重瓣水仙叶片。比例尺 = 6 μm (×500)
Plate
1. The mature period petal of univalve flower treatments by the CCC. Scale bar = 55 μm (×75)
2. The mature period petal of multiple valve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 18 μm (×220)
3. The mature period catacorolla of univalve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 25 μm (×140)
4. The mature period leaf of multiple valve flower treatments by the CCC. Scale bar = 60 μm (×60)
5. The mature period leaf of univalve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 70 μm (×75)
6. The namely tender period catacorolla of univalve flower treatments by the CCC. Scale bar = 24 μm (×170)
7. The namely tender period petal of univalve flower treatments by the CCC. Scale bar = 20 μm (×150)
8. The namely tender period petal of multiple valve flower treatments by the CCC. Scale bar = 12 μm (×270)
9. The namely tender period leaf of univalve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 42 μm (×70)
10. The namely tender period leaf of multiple valve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 34 μ m (×90)
11. The growth period petal of univalve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 9 μm (×330)
12. The growth period catacorolla of univalve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 11 μm (×270)
13. The growth period petal of univalve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 20 μm (×150)
14. The growth period catacorolla of univalve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 11 μm (×320)
15. The growth period petal of multiple valve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 11 μm (×320)
16. The growth period petal of univalve flower treatments by the CCC. Scale bar = 12 μm (×290)
17. The growth period petal of multiple valve flower treatments by the CCC. Scale bar = 15 μm (×120)
18. The growth period leaf of multiple valve flower treatments by the CCC. Scale bar = 35 μm (×80)
19. The growth period leaf of univalve flower treatments by the low temperature preservation, show the crystal. Scale bar = 30 μm (×110)
20. The growth period leaf of univalve flower treatments by the low temperature preservation, show the secretory cavity. Scale bar = 16 μm (×220)
21. The growth period leaf of univalve flower treatments by the low temperature preservation, show the secretory cavity. Scale bar = 17 μm (×190)
22. The growth period leaf of multiple valve flower treatments by the low temperature preservation, show the small vascular bundle. Scale bar = 14 μm (×250)
23. The growth period leaf of univalve flower treatments by the CCC, show the secretory cavity. Scale bar = 55 μm (×70)
24. The growth period leaf of multiple valve flower treatments by the CCC. Scale bar = 18 μm (×220)
25. The growth period leaf of multiple valve flower treatments by the CCC, show the small vascular bundle. Scale bar = 36 μm (×110)
26. The mature period petal of univalve flower treatments by the CCC. Scale bar = 38 μm (×90)
27. The mature period catacorolla of univalve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 12 μm (×270)
28. The mature period petal of univalve flower treatments by the low temperature preservation, show the vascular bundle. Scale bar = 11 μm (×320)
29. The mature period petal of multiple valve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 15 μm (×260)
30. The mature period petal of univalve flower treatments by the CCC. Scale bar = 13 μm (×300)
31. The mature period petal of multiple valve flower treatments by the CCC. Scale bar = 13 μm (×300)
32. The mature period leaf of univalve flower treatments by the low temperature preservation. Scale bar = 36 μm (110)
33. The mature period leaf of univalve flower treatments by the low temperature preservation, show the small vascular bundle. Scale bar = 14 μm (×250)
34. The mature period leaf of multiple valve flower treatments by the low temperature preservation, show the small vascular bundle. Scale bar = 13 μm (×230)
35. The mature period leaf of univalve flower treatments by the CCC. Scale bar = 13 μm (×230)
36. The mature period leaf of multiple valve flower treatments by the CCC. Scale bar = 6 μm (×500)
图版
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