1. 引言
红霉素(erythromycin, EM)是一种大环内酯类广谱抗生素,在畜牧业中被广泛用于疾病的防治。禽畜养殖过程中不规范使用红霉素会造成动物源食品中的药物残留,并通过食物链进入人体,危害人类的健康。欧盟、美国及我国对EM最大残留量均有明确规定。因此,食品中EM残留检测是食品安全与质量控制的重要环节。目前,检测EM及其残留的方法主要有HPLC及LC-MS/MS [1] [2] 等方法。这些方法均需要进行样品的前处理,传统的前处理技术有液-液萃取、固相萃取等,然而常用的萃取介质存在对目标物的特异性吸附不强,对动物源性食品中痕量残留物质富集倍数不高等问题。
分子印迹聚合物(molecularly imprinted polymers, MIPs)是一类被精心裁制的,对特定的模板分子有选择性结合的功能材料。由于MIPs具有特异识别性和较强的分离和富集能力,因此可以作为优良的固相萃取介质 [3] [4] [5] [6] 。传统方法制备的MIPs存在印迹位点包埋过深、模板分子难以洗脱、产率低、传质速度较慢等缺点 [7] [8] 。近年来发展的表面印迹技术可将分子印迹位点置于具有良好可接近性的固体颗粒表面,克服了传统分子印迹技术中的模板“包埋”现象,所制备的表面分子印迹聚合物具有特异的选择性、更易接近的结合位点、快速的传质速率和较高的结合动力等优点 [9] 。
本研究采用表面印迹聚技术,以红霉素为模板分子,甲基丙烯酸为功能单体,乙二醇二甲基丙烯酸酯为交联剂,在改性硅胶表面制备红霉素分子印迹聚合物。利用扫描电镜和粒径测定对聚合物形貌和物理特性进行表征;结合HPLC法,采用静态吸附平衡实验、动态吸附实验及选择性吸附实验对红霉素分子印迹聚合物的吸附性能进行考察,以期为建立红霉素药物和食品中痕量红霉素药物残留的分离、富集方法提供实验依据。
2. 仪器与试剂
红霉素(EM)、罗红霉素(ROX)均由北京万佳首化生物科技有限公司提供;硅胶(100-200目)、甲基丙烯酸(MAA)、乙二醇二甲基丙烯酸酯(EDMA)、偶氮二异丁腈(AIBN)均购于国药集团化学试剂有限公司;3-氨丙基三乙氧基硅烷(APTES)。MAA使用前经旋转蒸发以除去阻聚剂;EDMA使用前用5%的氢氧化钠洗涤以除去阻聚剂。
2300Ⅱ高效液相色谱仪(大连伊利特分析仪器有限公司);SHA-C型水浴恒温振荡器(江苏省金坛市医疗仪器厂);雷磁PHS-3C型pH计(上海精密科学仪器有限公司),LXJ-IIB低速大容量多管离心机(飞鸽牌);S-520型扫描电子显微镜(日本日立公司);KQ-250DB型数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司)。
3. 方法
3.1. 红霉素表面印迹聚合物的制备
3.1.1. 硅胶的活化及改性
取6 g硅胶置于50 mL 3 mol∙L−1的盐酸溶液中,常温静置24 h,然后用蒸馏水冲洗至中性,抽滤,60℃下干燥24 h,得到活化硅胶。
取活化硅胶5 g和50 mL甲苯置于100 mL圆底烧瓶中,缓慢加入硅烷偶联剂APTES 2 mL和三乙胺1 mL,90℃下磁力搅拌回流24 h。将反应后的硅胶用甲醇多次洗涤,50℃下真空干燥24 h,得到改性硅胶。
3.1.2. EM表面分子印迹聚合物的合成
称取0.1 g EM置于100 mL甲醇中,超声溶解,加入5 mL单体MAA和1.5 g改性硅胶,25℃恒温振荡6 h进行预组装。再加入交联剂EDMA 0.2 mL和引发剂AIBN 20 mg,超声30 min后,通N2 30 min,密封后60℃反应24 h。反应结束后,减压抽滤,用甲醇/冰醋酸溶液(体积比为9:1)洗涤3次,以除去模板分子红霉素,用丙酮冲洗,最后用蒸馏水洗至中性,真空干燥即得EM表面分子印迹聚合物。
非印迹聚合物(non-imprinted polymers, NIPs)的制备,除不加入模板分子EM外,其它步骤同上。
3.2. HPLC条件
本实验中含量测定均采用HPLC,色谱柱:Hypersil BDS C 18 (4.6 mm × 200 mm, 5 μm),柱温:25℃;流速:1.0 mL∙min−1。
红霉素色谱条件为:流动相,乙腈-磷酸盐缓冲液(pH = 8.2) (6:4, V/V);检测波长,215 nm。
罗红霉素色谱条件为:流动相,0.067 moL∙L−1磷酸二氢铵溶液(用三乙胺调节pH = 6.5)-乙腈(65:35, V/V);检测波长,210 nm。
3.3. 聚合物吸附性能的考察
3.3.1. 聚合物的静态吸附实验
精密称定EM-MIPs 20.0 mg,放入10 mL锥形瓶中,加入不同浓度的EM甲醇溶液各4 mL,充分混合后于25℃恒温空气振荡器内振荡24 h。高速离心沉淀,吸取上清液,用HPLC测定平衡质量浓度,NIPs按同样操作进行。平衡吸附量(Q)按公式(1)计算 [10] 。
(1)
式中:
为吸附前EM的质量浓度(mg∙mL−1);
为吸附后t时间溶液中EM的平衡质量浓度(mg∙mL−1);V为EM溶液体积(mL);m为MIPs或NIPs的质量(g)。
3.3.2. 聚合物的动态吸附试验
分别精密称定20.0 mg EM-MIPs和NIPs各8份,于10 mL锥形瓶中,加入10 mL一定浓度的红霉素溶液,25℃恒温空气振荡器内振荡,分别于0.5、1、1.5、2、2.5、3、4、5 h取样,离心,测定上清液中游离红霉素的含量。
3.3.3. 聚合物的吸附选择性实验
分别精密称定20.0 mg EM-MIPs和NIPs,于10 mL锥形瓶中,分别加入0.4 mg∙mL−1的红霉素溶液和罗红霉素溶液各10 mL,25℃恒温空气振荡器内振荡24 h,离心,取上清液,测定游离含量。
4. 结果
4.1. 硅胶表面红霉素分子印迹聚合物的制备
先对硅胶颗粒进行酸活化处理,使其表面含有羟基基团。偶联剂APTES与活化硅胶发生反应,化学键合于硅胶微粒表面,将氨基基团接枝在硅胶表面。加入的EM和MAA通过羧基与硅胶表面的氨基相互作用,从而在硅胶表面发生聚合反应,使聚合物层包覆在硅胶表面,洗脱模板后,形成EM表面分子印迹聚合物。
4.2. 聚合物的形貌表征
4.2.1. 扫描电镜
借助扫描电镜分别对活化硅胶和EM-MIPs的表面形貌特征进行了观察,结果如图1所示。与活化硅胶相比,EM-MIPs的表面更粗糙,表明聚合物层在硅胶表面接枝成功。
4.2.2. 粒径分布测定
硅胶微粒和EM-MIPs微粒的粒径分布如图2所示。硅胶微粒的平均粒径为60.5 μm,表面包覆聚合物层的EM-MIPs微粒的平均粒径为80.4 μm,表明硅胶微粒表面形成了聚合物层,粒径增大。
4.3. 聚合物吸附性能的考察
4.3.1. 静态吸附实验
聚合物的静态吸附实验结果如图3所示。随着溶液EM浓度从0.2 mg∙mL−1升高到4.0 mg∙mL−1,聚合物的吸附量均增加,当溶液浓度增加至2.0 mg∙mL−1,聚合物对EM的吸附处于平衡状态,MIPs和NIPs聚合物的饱和吸附量分别为101.3 mg∙g−1和70.2 mg∙g−1。在整个吸附过程中,随着EM初始浓度的升高,MIPs的吸附量明显大于NIPs的吸附量,可以看出MIPs对EM有明显的富集吸附的作用,有特异的吸附能力。在制备过程中,EM与MAA间存在氢键、静电作用力等非共价作用力,使硅胶表面形成了能与EM分子相匹配且具有特异识别位点的三维孔穴结构,因此MIPs除有同NIPs一样的非特异性吸附外,还存在对模板分子的特异性吸附位点。
4.3.2. 动态吸附实验
聚合物的动态吸附实验结果如图4所示。随时间增加,聚合物对模板分子EM的吸附量均呈增加趋势,在3 h后吸附达到平衡,且在任何时间段,MIPs对EM的吸附量均明显高于NIPs。
4.3.3. 吸附选择性实验
为考察MIPs对模板分子红霉素的选择性识别能力,选择罗红霉素为类似物进行吸附选择性实验。用红霉素及罗红霉素为底物,由平衡结合方法测定MIPs和NIPs对底物的结合量,并计算静态吸附分配系数KD和分离因子α。
MIPs对分子的选择识别性能通常用静态分配系数KD和分离因子α来表征 [11] 。
静态分配系数KD的定义为:
![](//html.hanspub.org/file/3-1560089x13_hanspub.png)
(a)(b)
Figure 1. SEM images of (a) EM-MIPs and (b) activated silica gels
图1. (a) EM-MIPs和(b) 活化硅胶的扫描电镜图
(a)(b)
Figure 2. Size distribution of (a) silica gels and (b) EM-MIPs
图2. (a) 硅胶微粒和(b) EM-MIPs粒径分布
![](//html.hanspub.org/file/3-1560089x18_hanspub.png)
Figure 3. Adsorption isotherms of MIPs and NIPs
图3. 聚合物的吸附等温线
![](//html.hanspub.org/file/3-1560089x19_hanspub.png)
Figure 4. Adsorption dynamic curves of MIPs and NIPs
图4. 聚合物的动态吸附曲线
![](Images/Table_Tmp.jpg)
Table 1. The recognizing ability of MIPs and NIPs
表1. MIPs和NIPs分子识别性能
式中,Cp表示底物在聚合物中的浓度,Cs表示底物在溶液中的浓度。KD越大说明MIPs对底物的吸附能力越强。
分离因子α的定义为:
![](//html.hanspub.org/file/3-1560089x20_hanspub.png)
式中,
和
分别表示模板分子和竞争分子的静态分配系数。α越大表明MIPs对模板分子的选择专一性越好。若α < 1,则表明MIPs对底物没有选择性;若α > 1则表明,MIPs对底物有一定的选择性。
由表1可见,MIPs中红霉素的KD明显大于罗红霉素的KD,表明MIPs对红霉素的吸附能力更强。MIPs中红霉素的KD明显大于NIPs中红霉素的KD,表明MIPs对红霉素分子产生了明显的印迹效应。α的数值表明MIP对模板分子红霉素有一定的选择性,对罗红霉素没有选择性。
5. 结论
本实验以红霉素为模板分子采用表面分子印迹技术制备了红霉素分子印迹聚合物,扫描电镜和粒径分析结果显示聚合物层已成功接枝在硅胶表面;静态吸附平衡实验、动态吸附实验和吸附选择性实验结果表明EM-MIPs对EM具有良好的吸附性能和特异选择识别能力,用于选择性分离、富集红霉素是可行的。
基金项目
国家级大学生创新创业训练计划(201510439080),泰安市科技发展计划(2016NS1077)。